Artigo

Pode o azul de metileno contornar o Complexo III mitocondrial? Porque é que os estudos divergem

Pode o azul de metileno contornar o Complexo III mitocondrial? Porque é que os estudos divergem

Dois laboratórios investigaram se o azul de metileno consegue contornar um Complexo III mitocondrial bloqueado. Um respondeu que não. O outro respondeu que sim. Ambos tinham dados.

O primeiro estudo, em mitocôndrias cerebrais de ratinho, concluiu que o corante não consegue fazê-lo. O segundo, em mitocôndrias cerebrais de três espécies de roedores, concluiu que consegue fazê-lo parcialmente. Um terceiro estudo, em fígado de ratinho, é frequentemente citado no mesmo contexto, mas testou outra coisa. Mantê-lo no devido lugar elimina metade da confusão.

Não existe um mecanismo universal que possa ser proclamado. Existem três experiências com bloqueadores, doses e parâmetros de leitura diferentes. Leia primeiro as condições. As conclusões decorrem delas.

O que significa contornar neste contexto

Os eletrões entram na cadeia através do Complexo I (a partir de NADH) ou do Complexo II (a partir de succinato), passam pelo Complexo III até ao citocromo c e, depois, pelo Complexo IV até ao oxigénio. O gradiente criado ao longo deste percurso é aquilo que a célula utiliza para produzir ATP.

Uma alegação de desvio significa que o azul de metileno capta eletrões a montante de um bloqueio e os entrega a jusante. O corante oxidado recebe eletrões do NADH ou de componentes iniciais da cadeia, transformando-se em leucoazul de metileno, e a forma reduzida transfere-os para o citocromo c ou novamente para a cadeia. Se a transferência ocorrer a jusante do bloqueio, a respiração e o potencial de membrana recuperam parcialmente. Se ocorrer no próprio bloqueio ou a montante dele, não há recuperação.

Um pormenor do Complexo III determina grande parte desta controvérsia. O complexo executa um ciclo Q com dois locais de inibição. A antimicina liga-se ao local Qi. O mixotiazol liga-se ao local Qo. Um estudo que utilize apenas um deles testou apenas metade do complexo.

Estudo um: sem desvio em mitocôndrias cerebrais de ratinho

Gureev e colaboradores utilizaram mitocôndrias do córtex de ratinhos C57BL/6, isoladas com digitonina, analisadas a 0.1 mg de proteína por ml. Os substratos abrangeram três regimes: piruvato mais malato a 5 mM cada, succinato a 10 mM com glutamato a 2 mM e L-prolina a 10 mM. Os bloqueadores foram rotenona a 1 micromolar (Complexo I) e antimicina a 1 microgram per ml (Complexo III). As doses do corante foram 0.5, 1 e 2 micromolar, sendo 1 micromolar a concentração principal. Os métodos e os traçados encontram-se na comunicação da FEBS Letters.

O desvio do Complexo I funcionou. A rotenona reduziu a respiração estimulada por ADP de cerca de 121 para cerca de 2 nmol per minute per mg, e 1 micromolar de corante restaurou-a para cerca de 21. O potencial de membrana recuperou com piruvato mais malato e com L-prolina.

O desvio do Complexo III não funcionou. A antimicina reduziu a respiração para cerca de 16, e o corante elevou-a apenas para cerca de 20. O potencial de membrana não recuperou com nenhum substrato, com doses do corante até 5 micromolar. Os dados de peróxido apontaram na mesma direção: o corante isoladamente aumentou a emissão de peróxido de uma taxa basal próxima de 76 pmol per minute per mg para aproximadamente 1170, 1460 e 1945 nas três doses, mas a antimicina reduziu esse sinal induzido pelo corante em cerca de 25, 88 e 96 percent, respetivamente. Se o corante reduzido reagisse diretamente com o oxigénio, o bloqueio do Complexo III não deveria suprimir o sinal. Os autores inferiram que o corante reduzido é oxidado no local Qo do Complexo III, a montante do bloqueio pela antimicina. Circuito curto, por palavras: dadores para o corante, corante para Qo, percurso normal daí em diante. A rotenona é contornada. A antimicina não.

Estudo dois: desvio parcial em três espécies, em ambos os locais de inibição

Svab e colaboradores alargaram o desenho experimental. Utilizaram mitocôndrias cerebrais de ratinhos, ratos e porquinhos-da-índia, isoladas com Percoll, analisadas aos mesmos 0.1 mg per ml, com piruvato mais malato ou glutamato mais malato a 5 mM cada. Utilizaram dois bloqueadores do Complexo III: antimicina A a 0.3 micromolar e mixotiazol a 1 micromolar. O corante foi utilizado a 2 micromolar na maioria dos ensaios e a 0.5 nos ensaios com citocromo c. As três espécies, com protocolos equivalentes, estão descritas no artigo de acesso aberto.

Ambos os bloqueios foram parcialmente contornados nas três espécies. Nas mitocôndrias de ratinho, a antimicina suprimiu a respiração e o corante aumentou-a cerca de 60 percent, de aproximadamente 37 para 59 nmol per minute per mg. O mixotiazol suprimiu-a em 88 percent, para cerca de 4.5, e o corante aumentou-a cinco vezes, para cerca de 23. O potencial de membrana repolarizou parcialmente sob qualquer um dos inibidores, medido com dois corantes (safranina O e TMRM ratiométrico) para excluir artefactos óticos.

Este artigo também testou diretamente a transferência de eletrões, algo que o primeiro estudo nunca fez. O citocromo c acetilado exógeno a 25 micromolar não foi reduzido por mitocôndrias energizadas, com ou sem inibidores, mas a adição do corante promoveu a redução em ambos os casos. Num tampão sem células, NADH mais corante reduziu o citocromo c a uma velocidade proporcional ao NADH. Salto mais longo, por palavras: equivalentes redutores para o corante, corante diretamente para o citocromo c, Complexo IV para o oxigénio. Esta via ignora totalmente o Complexo III, pelo que ambos os bloqueadores podem ser contornados.

Dois parâmetros adicionais sustentam esta interpretação. A fluorescência de NAD(P)H diminuiu quando o corante foi adicionado a mitocôndrias tratadas com mixotiazol, indicando que os equivalentes redutores eram drenados pela nova via. E a absorbância do corante a 660 nm acompanhou sucessivamente cada adição, enquanto os sobrenadantes após centrifugação mostraram que o corante oxidado se concentrava mais de cem vezes no interior das mitocôndrias energizadas e depois saía quando o potencial colapsava. A economia de protões também é coerente: ignorar as etapas de bombeamento deixa aproximadamente 2 protões por par de eletrões em vez de 10, pelo que um consumo de oxigénio mais rápido acompanhado apenas de repolarização parcial é precisamente o aspeto esperado de um verdadeiro desvio, e não evidência contra ele.

A mesma preparação produziu respostas que penalizam uma leitura superficial. Com inibidor mais corante, o ADP reduziu a respiração em vez de a aumentar, e o bloqueio do transporte estimulou-a em vez de a abrandar, enquanto o potencial de membrana continuou a deslocar-se nas direções normais. O consumo de oxigénio, isoladamente, é enganador neste sistema.

Vias concorrentes de transferência de eletrões do azul de metileno em torno do Complexo III. A via A introduz eletrões no local Qo e mantém-se sensível à antimicina. A via B transfere eletrões diretamente para o citocromo c e ignora o complexo.

Estudo três: o estudo hepático que testou os Complexos I e II, não o III

Lee e Boelsterli utilizaram mitocôndrias hepáticas de ratinho e hepatócitos cultivados lesionados por efavirenz (Complexo I, IC50 perto de 30 micromolar) e hidrazina, o metabolito da isoniazida (Complexo II, IC50 perto de 30 micromolar). O corante a cerca de 30 micromolar restaurou a oxidação de NADH, o potencial de membrana e o ATP, ao mesmo tempo que reduziu oxidantes e morte necrótica. O artigo da Redox Biology modela o processo como o transporte de eletrões pelo corante em torno dos Complexos I e II lesionados.

Esse resultado constitui contexto estabelecido a montante e não diz nada sobre o Complexo III, porque nada nesse estudo foi bloqueado nesse ponto. Não pode confirmar nem refutar nenhum dos estudos cerebrais.

A matriz de condições

CondiçãoGureev 2019Svab 2021Lee 2014
Espécie e tecidoCórtex cerebral de ratinhoCérebro de ratinho, rato e porquinho-da-índiaFígado de ratinho, mitocôndrias e células
Dose do corante0.5 a 2 micromolar, principal 12 micromolar, 0.5 nos ensaios de cyt cCerca de 30 micromolar
Bloqueador do Complexo IIIAntimicina 1 ug per ml, apenas QiAntimicina 0.3 uM mais mixotiazol 1 uM, Qi e QoNenhum
SubstratosPM, succinato glutamato, prolinaPM ou GMLigados a NADH, lesão de I e II
Parâmetros principaisRespiração, potencial, peróxidoRespiração, potencial por dois corantes, NAD(P)H, redox do corante, redução de cyt cEnergética, potencial, ATP, oxidantes, morte
ResultadoDesvio de Complexo I sim, III nãoDesvio parcial sob qualquer bloqueador de IIIDesvio em torno da lesão de I e II

Matriz lado a lado dos três estudos por espécie, dose do corante, bloqueador e resultado.

Quatro razões pelas quais ambos os estudos do Complexo III podem estar corretos nas respetivas condições experimentais

1. O bloqueador não foi a mesma intervenção. Antimicina isoladamente a 1 microgram per ml comparada com antimicina a 0.3 micromolar mais um bloqueador separado do local Qo. Uma via do corante que alimente o local Qo falha precisamente onde uma via direta para o citocromo c tem êxito. Um único local não pode representar ambos.

2. A dose do corante e o tempo diferiram. Concentrações principais de 1 contra 2 micromolar, num ciclador redox cuja captação e redução direta do citocromo c dependem da concentração e do tempo. Pequenas diferenças de dose, combinadas com diferentes momentos de leitura, podem revelar segmentos diferentes da mesma rede.

3. As preparações diferiram. O isolamento com digitonina, comparado com o isolamento por gradiente de Percoll, seleciona populações mitocondriais sobrepostas, mas não idênticas. A concentração de proteína foi igual, a 0.1 mg per ml, pelo que essa variável deixa de explicar a diferença, mas a subpopulação e a integridade não. E a hipótese de uma diferença entre espécies foi eliminada: o segundo grupo reproduziu o seu fenótipo também em ratinho.

4. O estado do substrato determina o que o corante consegue fazer. Três regimes de substratos comparados com pares ligados a NADH. O fornecimento de NADH e o potencial de membrana determinam em conjunto a velocidade com que o corante é reduzido e onde se distribui, e uma via que necessite de corante reduzido junto de citocromo c oxidado fica condicionada por essa escolha.

Como interpretar a próxima alegação de desvio

Pergunte qual o complexo que foi bloqueado, com que inibidor, em que local e a que dose. Pergunte a concentração do corante e quando foi efetuada a leitura. Pergunte qual o tecido, a espécie, o método de isolamento, a concentração de proteína e o substrato. E pergunte se o potencial, a respiração, o estado redox e um ensaio direto de transferência concordam entre si, porque o consumo de oxigénio, por si só, apontou na direção errada mais do que uma vez nestes estudos.

O resumo restrito mantém-se. O desvio pelo corante em torno do Complexo I é consensual. Em torno do Complexo III, mitocôndrias de ratinho com antimicina a 1 microgram per ml e corante a 1 micromolar não mostram desvio funcional, enquanto três espécies com antimicina a 0.3 micromolar ou mixotiazol a 1 micromolar e corante a 2 micromolar mostram desvio parcial com transferência direta do corante para o citocromo c. Estas afirmações são compatíveis entre si. Qualquer conclusão mais abrangente é uma extrapolação.

Leituras relacionadas mantêm a alegação contestada dentro da química estabelecida: como o azul de metileno transfere eletrões para compreender o mecanismo de retransmissão, as experiências de desvio do Complexo I para o caso estabelecido a montante, leituras do potencial de membrana e os respetivos artefactos para compreender porque foram necessários dois corantes, e o manuseamento laboratorial de cicladores redox para os riscos associados à dose e ao momento da medição.--- articleId: R05 author: Nathaniel Kessler authorSlug: nathaniel-kessler storefrontId: blupreme locale: pt-PT slug: azul-de-metileno-contornar-complexo-iii-porque-estudos-divergem title: "Pode o azul de metileno contornar o Complexo III mitocondrial? Porque é que os estudos divergem" excerpt: "Dois estudos com mitocôndrias isoladas colocaram a mesma questão e chegaram a respostas opostas. As condições explicam a divergência." publishedAt: "2026-10-10" status: published categories:

  • "Medical Uses & Research"
  • "Laboratory & Industry" topicPillar: "Cellular mechanisms and pharmacology" relatedPageIds:
  • H03
  • R01
  • R03
  • L12 coverImage: /content-media/en/articles/methylene-blue-complex-iii-bypass/media/cover.webp seo: title: "Desvio do Complexo III pelo azul de metileno: o que mostram os estudos contraditórios" description: "O desvio da cadeia de transporte de eletrões pelo azul de metileno está estabelecido para o Complexo I, mas continua em discussão para o Complexo III. Compare as experiências em mitocôndrias de ratinho, rato e porquinho-da-índia por inibidor, substrato e dose."

Dois laboratórios investigaram se o azul de metileno consegue contornar um Complexo III mitocondrial bloqueado. Um concluiu que não. O outro concluiu que sim. Ambos tinham dados.

O primeiro estudo, em mitocôndrias cerebrais de ratinho, concluiu que o corante não consegue fazê-lo. O segundo, em mitocôndrias cerebrais de três espécies de roedores, concluiu que consegue fazê-lo parcialmente. Um terceiro estudo, em fígado de ratinho, é frequentemente citado neste contexto, mas testou outra questão. Colocá-lo no devido contexto elimina metade da confusão.

Não existe um mecanismo universal que se possa afirmar. Existem três experiências com bloqueadores, doses e parâmetros de medição diferentes. Primeiro, é preciso ler as condições. As conclusões decorrem delas.

O que significa contornar neste contexto

Os eletrões entram na cadeia através do Complexo I (a partir de NADH) ou do Complexo II (a partir de succinato), passam pelo Complexo III para o citocromo c e depois pelo Complexo IV até ao oxigénio. O gradiente criado ao longo do percurso é aquilo que a célula utiliza para produzir ATP.

Uma alegação de desvio significa que o azul de metileno capta eletrões a montante de um bloqueio e os entrega a jusante. O corante oxidado recebe eletrões do NADH ou de componentes iniciais da cadeia, transformando-se em leucoazul de metileno, e a forma reduzida transfere-os para o citocromo c ou novamente para a cadeia. Se a transferência ocorrer a jusante do bloqueio, a respiração e o potencial de membrana recuperam parcialmente. Se ocorrer no próprio bloqueio ou a montante dele, não há recuperação.

Um pormenor do Complexo III determina grande parte desta divergência. O complexo executa um ciclo Q com dois locais de inibição. A antimicina liga-se ao local Qi. O mixotiazol liga-se ao local Qo. Um estudo que utilize apenas um deles testou apenas metade do complexo.

Estudo um: sem desvio em mitocôndrias cerebrais de ratinho

Gureev e colaboradores utilizaram mitocôndrias do córtex de ratinhos C57BL/6, isoladas com digitonina, analisadas a 0.1 mg de proteína por ml. Os substratos abrangeram três regimes: piruvato mais malato a 5 mM cada, succinato a 10 mM com glutamato a 2 mM e L-prolina a 10 mM. Os bloqueadores foram rotenona a 1 micromolar (Complexo I) e antimicina a 1 microgram per ml (Complexo III). As doses do corante foram 0.5, 1 e 2 micromolar, sendo 1 micromolar a concentração principal. Os métodos e os traçados encontram-se na comunicação da FEBS Letters.

O desvio do Complexo I funcionou. A rotenona reduziu a respiração estimulada por ADP de cerca de 121 para cerca de 2 nmol per minute per mg, e 1 micromolar de corante restaurou-a para cerca de 21. O potencial de membrana recuperou com piruvato mais malato e com L-prolina.

O desvio do Complexo III não funcionou. A antimicina reduziu a respiração para cerca de 16, e o corante elevou-a apenas para cerca de 20. O potencial de membrana não recuperou com nenhum substrato, com doses do corante até 5 micromolar. Os dados de peróxido apontaram na mesma direção: o corante isoladamente aumentou a emissão de peróxido de uma taxa basal próxima de 76 pmol per minute per mg para aproximadamente 1170, 1460 e 1945 nas três doses, mas a antimicina reduziu esse sinal induzido pelo corante em cerca de 25, 88 e 96 percent, respetivamente. Se o corante reduzido reagisse diretamente com o oxigénio, o bloqueio do Complexo III não deveria suprimir o sinal. Os autores inferiram que o corante reduzido é oxidado no local Qo do Complexo III, a montante do bloqueio pela antimicina. Circuito curto, por palavras: dadores para o corante, corante para Qo, percurso normal daí em diante. A rotenona é contornada. A antimicina não.

Estudo dois: desvio parcial em três espécies, em ambos os locais de inibição

Svab e colaboradores alargaram o desenho experimental. Utilizaram mitocôndrias cerebrais de ratinhos, ratos e porquinhos-da-índia, isoladas com Percoll, analisadas aos mesmos 0.1 mg por ml, com piruvato mais malato ou glutamato mais malato a 5 mM cada. Utilizaram dois bloqueadores do Complexo III: antimicina A a 0.3 micromolar e mixotiazol a 1 micromolar. O corante foi utilizado a 2 micromolar na maioria dos ensaios e a 0.5 nos ensaios com citocromo c. As três espécies, com protocolos equivalentes, estão descritas no artigo de acesso aberto.

Ambos os bloqueios foram parcialmente contornados nas três espécies. Nas mitocôndrias de ratinho, a antimicina suprimiu a respiração e o corante aumentou-a cerca de 60 percent, de aproximadamente 37 para 59 nmol per minute per mg. O mixotiazol suprimiu-a em 88 percent, para cerca de 4.5, e o corante aumentou-a cinco vezes, para cerca de 23. O potencial de membrana repolarizou parcialmente sob qualquer um dos inibidores, medido com dois corantes (safranina O e TMRM ratiométrico) para excluir artefactos óticos.

Este artigo também testou diretamente a transferência, algo que o primeiro estudo nunca fez. O citocromo c acetilado exógeno a 25 micromolar não foi reduzido por mitocôndrias energizadas, com ou sem inibidores, mas a adição do corante promoveu a redução em ambos os casos. Num tampão sem células, NADH mais corante reduziu o citocromo c a uma velocidade proporcional ao NADH. Salto mais longo, por palavras: equivalentes redutores para o corante, corante diretamente para o citocromo c, Complexo IV para o oxigénio. Esta via ignora totalmente o Complexo III, pelo que ambos os bloqueadores podem ser contornados.

Dois parâmetros adicionais sustentam esta interpretação. A fluorescência de NAD(P)H diminuiu quando o corante foi adicionado a mitocôndrias tratadas com mixotiazol, indicando que os equivalentes redutores eram drenados pela nova via. E a absorbância do corante a 660 nm acompanhou sucessivamente cada adição, enquanto os sobrenadantes após centrifugação mostraram que o corante oxidado se concentrava mais de cem vezes no interior das mitocôndrias energizadas e depois saía quando o potencial colapsava. A economia de protões também é coerente: ignorar as etapas de bombeamento deixa aproximadamente 2 protões por par de eletrões em vez de 10, pelo que um consumo de oxigénio mais rápido acompanhado apenas de repolarização parcial é precisamente o que se espera de um verdadeiro desvio, e não evidência contra ele.

A mesma preparação produziu respostas que penalizam uma leitura superficial. Com inibidor mais corante, o ADP reduziu a respiração em vez de a aumentar, e o bloqueio do transporte estimulou-a em vez de a abrandar, enquanto o potencial de membrana continuou a deslocar-se nas direções normais. O consumo de oxigénio, isoladamente, é enganador neste sistema.

Vias concorrentes de transferência de eletrões do azul de metileno em torno do Complexo III. A via A introduz eletrões no local Qo e mantém-se sensível à antimicina. A via B transfere eletrões diretamente para o citocromo c e ignora o complexo.

Estudo três: o estudo hepático que testou os Complexos I e II, não o III

Lee e Boelsterli utilizaram mitocôndrias hepáticas de ratinho e hepatócitos cultivados lesionados por efavirenz (Complexo I, IC50 perto de 30 micromolar) e hidrazina, o metabolito da isoniazida (Complexo II, IC50 perto de 30 micromolar). O corante a cerca de 30 micromolar restaurou a oxidação de NADH, o potencial de membrana e o ATP, ao mesmo tempo que reduziu oxidantes e morte necrótica. O artigo da Redox Biology modela o processo como o transporte de eletrões pelo corante em torno dos Complexos I e II lesionados.

Esse resultado constitui contexto estabelecido a montante e não diz nada sobre o Complexo III, porque nada nesse estudo foi bloqueado nesse ponto. Não pode confirmar nem refutar nenhum dos estudos cerebrais.

A matriz de condições

CondiçãoGureev 2019Svab 2021Lee 2014
Espécie e tecidoCórtex cerebral de ratinhoCérebro de ratinho, rato e porquinho-da-índiaFígado de ratinho, mitocôndrias e células
Dose do corante0.5 a 2 micromolar, principal 12 micromolar, 0.5 nos ensaios de cyt cCerca de 30 micromolar
Bloqueador do Complexo IIIAntimicina 1 ug per ml, apenas QiAntimicina 0.3 uM mais mixotiazol 1 uM, Qi e QoNenhum
SubstratosPM, succinato glutamato, prolinaPM ou GMLigados a NADH, lesão de I e II
Parâmetros principaisRespiração, potencial, peróxidoRespiração, potencial por dois corantes, NAD(P)H, redox do corante, redução de cyt cEnergética, potencial, ATP, oxidantes, morte
ResultadoDesvio de Complexo I sim, III nãoDesvio parcial sob qualquer bloqueador de IIIDesvio em torno da lesão de I e II

Matriz lado a lado dos três estudos por espécie, dose do corante, bloqueador e resultado.

Quatro razões pelas quais ambos os estudos do Complexo III podem estar corretos nas respetivas condições experimentais

1. O bloqueador não foi a mesma intervenção. Antimicina isoladamente a 1 microgram per ml comparada com antimicina a 0.3 micromolar mais um bloqueador separado do local Qo. Uma via do corante que alimente o local Qo falha precisamente onde uma via direta para o citocromo c tem êxito. Um único local não pode representar ambos.

2. A dose do corante e o tempo diferiram. Concentrações principais de 1 contra 2 micromolar, num ciclador redox cuja captação e redução direta do citocromo c dependem da concentração e do tempo. Pequenas diferenças de dose, combinadas com diferentes momentos de leitura, podem revelar segmentos diferentes da mesma rede.

3. As preparações diferiram. O isolamento com digitonina, comparado com o isolamento por gradiente de Percoll, seleciona populações mitocondriais sobrepostas, mas não idênticas. A concentração de proteína foi igual, a 0.1 mg per ml, pelo que essa variável deixa de explicar a diferença, mas a subpopulação e a integridade não. E a hipótese de uma diferença entre espécies foi eliminada: o segundo grupo reproduziu o seu fenótipo também em ratinho.

4. O estado do substrato determina o que o corante consegue fazer. Três regimes de substratos comparados com pares ligados a NADH. O fornecimento de NADH e o potencial de membrana determinam em conjunto a velocidade com que o corante é reduzido e onde se distribui, e uma via que necessite de corante reduzido junto de citocromo c oxidado fica condicionada por essa escolha.

Como interpretar a próxima alegação de desvio

Pergunte qual o complexo que foi bloqueado, com que inibidor, em que local e a que dose. Pergunte a concentração do corante e quando foi efetuada a leitura. Pergunte qual o tecido, a espécie, o método de isolamento, a concentração de proteína e o substrato. E pergunte se o potencial, a respiração, o estado redox e um ensaio direto de transferência concordam entre si, porque o consumo de oxigénio, por si só, apontou na direção errada mais do que uma vez nestes estudos.

O resumo restrito mantém-se. O desvio pelo corante em torno do Complexo I é consensual. Em torno do Complexo III, mitocôndrias de ratinho com antimicina a 1 microgram per ml e corante a 1 micromolar não mostram desvio funcional, enquanto três espécies com antimicina a 0.3 micromolar ou mixotiazol a 1 micromolar e corante a 2 micromolar mostram desvio parcial com transferência direta do corante para o citocromo c. Estas afirmações são compatíveis entre si. Qualquer conclusão mais abrangente é uma extrapolação.

As leituras relacionadas mantêm a alegação contestada dentro da química estabelecida: como o azul de metileno transfere eletrões para compreender o mecanismo de retransmissão, as experiências de desvio do Complexo I para o caso estabelecido a montante, leituras do potencial de membrana e os respetivos artefactos para compreender porque foram necessários dois corantes, e o manuseamento laboratorial de cicladores redox para os riscos associados à dose e ao momento da medição.

Google AdSense