Makale

Zebra balığı araştırmalarında metilen mavisi: bakım katkısı ve deneysel karıştırıcı etken

Zebra balığı araştırmalarında metilen mavisi: bakım katkısı ve deneysel karıştırıcı etken

Zebra balığı yumurtalarının bulunduğu su genellikle hafif mavidir ve bunun nedenini neredeyse hiç kimse kaydetmez. Boya, mantarı önlemek için eklenen metilen mavisidir ve çoğu protokol bunu arka planın bir parçası olarak ele alır. Burada arka plan kavramı yanlıştır. Daha uygun kavram, kayda geçirilmemiş bir deneysel faktördür: uygulama yapılan kaplarda bulunan, kontrollerde bulunmayan, kullanılan konsantrasyonlarda farmakolojik olarak etkin olan ve deneyin ölçtüğü sonlanım noktalarını değiştirebilen bir madde.

Aşağıdaki tüm değerlendirmelerin temelinde bu ayrım vardır. Rutin mantar önleyici bakım bir konudur. Katkının analiziniz açısından etkisiz olup olmadığı ise başka bir konudur. Zebra balığına ilişkin güncel literatür, ilk soruya güven verici, ikinci soruya ise kaygı verici bir yanıt sunar.

Kılavuzlar gerçekte ne öngörüyor?

Tek bir standart yoktur ve sorunun bir kısmı da budur. Kanada Hayvan Bakımı Konseyinin kılavuzu, mantar gelişimini azaltmak için yumurta ve larva taşıma çözeltisinde 0.5 mg/L, yani 0.00005% kullanımına izin verir. Avrupa laboratuvar hayvanı kılavuzu, embriyoların çoğunlukla aynı 0.00005% konsantrasyonunu içeren ortamda tutulduğunu belirtir. Cold Spring Harbor E3 tarifi, bunun iki katını, 1 mg/L veya 0.0001% konsantrasyonunu, tarifin bir bileşeni olarak belirtir. Buna karşılık dikkat çekici bir eksiklik vardır: OECD balık embriyosu toksisite testi kılavuzu, yeniden hazırlanmış seyreltme suyunu ve test kimyasalını belirtir; ancak ne 2013 sürümünde ne de sonraki revizyonda metilen mavisi önerisi yer alır. Dolayısıyla bir laboratuvar zebra balığı embriyolarını yaşamlarının ilk saatlerinden itibaren metilen mavisi içeren mavi suda yetiştirirken, bir diğeri mevzuata yönelik embriyo testini berrak suda yürütür ve her ikisi de kendi ortamını normal olarak adlandırır. Laboratuvarlar arasında sonuçları karşılaştıran veya geçmiş kontrol verilerini bir araya getiren herkes bu tutarsızlığı devralır.

Konsantrasyonları bağlama oturtmak gerekirse, 0.00005% yaklaşık 1.56 mikromolar, 0.0001% ise yaklaşık 3.13 mikromolardır. Bunlar düşük değerlerdir ve etki yaratamayacak kadar düşük olduklarını düşünmek kolaydır. Aşağıdaki çalışmalar tam olarak bu varsayımı, tam olarak bu konsantrasyonlarda sınar.

Laboratuvar yerine akvaryum hobisi üzerinden gelen okurlar, aynı molekülle farklı bir ortamda karşılaşır; bu kullanım akvaryumda metilen mavisi kılavuzunda ele alınır. Kimya aynıdır; boyanın hücreler içinde elektronları nasıl taşıdığına ilişkin açıklama, redoks etkin bir bileşiğin metabolizma makalelerinde neden sürekli karşımıza çıktığını gösterir. Aşağıdaki değerlendirme, özellikle metilen mavisi içeren zebra balığı yumurta suyuna ilişkindir.

Metabolizma: etkinin yönü evreye göre değişir

En fazla bilgi sağlayan çalışmada, normal gelişen zebra balıkları yaşamlarının ilk gününden döllenmeden sonraki 5. güne kadar metilen mavisine maruz bırakılmış ve her evrede oksidatif metabolizmaları ölçülmüştür; yöntem embriyo metabolizması deneylerinin yayımlanmış raporunda açıklanır. Etkinin yönü tersine döndüğü için bu örüntüyü dikkatle ortaya koymak gerekir.

Döllenmeden sonraki 1. günde, maruz bırakılan embriyolarda her iki bakım konsantrasyonunda da bazal oksijen tüketimi arttı. 2. günde, larvaların yüzey tabakasındaki mitokondriyal membran potansiyeli 0.00005%, 0.0001% ve 0.0003% maruziyetlerinin tümünde yükseldi. 4. ve 5. günlere gelindiğinde, yumurtadan çıkışın ardından etkinin yönü tersine dönmüştü: maruziyet ister döllenmeden beri kesintisiz sürmüş olsun ister yalnızca 3. günden 4. güne kadar akut olarak uygulanmış olsun, oksidatif enerji harcaması azaldı. Buna paralel olarak, hem 1. hem de 4. günde mitokondriyal solunum kompleksi alt birimlerine ait transkriptler, steroidogenez ve glukoneogenezle ilişkili transkriptlerle birlikte azaldı.

İki ek gözlem tabloyu netleştirir. Daha yüksek bakım konsantrasyonunda yumurtadan çıkış biraz erken gerçekleşti; maruz bırakılan embriyolar 2. günde öndeyken kontroller 3. güne kadar onlara yetişti. Stres ekseninin kendisi ise işlevini koruyor görünüyordu: 5 günlük larvalar girdap oluşturan bir stres etkenine maruz bırakıldığında, tüm vücuttaki kortizol düzeyi her iki grupta da normal biçimde yükseldi. Dolayısıyla boya bu dozlarda genel bir gelişimsel zehir değildir ve tüm fizyolojik yanıtları baskılamaz. Enerji metabolizmasını evreye bağlı olarak değiştirir: yumurtadan çıkıştan önce artırır, sonra azaltır.

Davranış: iki çalışma neden farklı sonuç veriyor ve ikisi de neden doğru olabilir?

Davranış literatürü, maruziyet tasarımları yan yana konulana kadar çelişkili görünür. Bir gelişimsel ve davranışsal güvenlik çalışmasında embriyolar döllenmeden yaklaşık 6 saat sonra, 10 mikromolara kadar konsantrasyonlara maruz bırakıldı; çözeltiler 4. güne kadar her gün yenilendi, ardından larvalar 5. ve 6. günlerde boyasız ortama taşındı ve 6. günde aydınlık-karanlık testinde lokomotor aktivite ölçüldü. Sonuç: ölüm oranı, yumurtadan çıkış veya morfoloji üzerinde anlamlı bir etki ve lokomotor aktivite üzerinde uygulamaya bağlı bir etki yoktu. Yazarlar, kendi koşullarında üst sınır olarak 10 mikromoları makul biçimde önerdi.

Metabolizma çalışmasıyla bazı yazarları ortak olan ikinci bir grup, maruziyeti bakımın gerçekte uygulandığı biçimde yürüttü: boya döllenmeden sonraki 2 ila 3. saatten itibaren ortamda bulundu, her gün kısmi yenileme yapıldı ve davranış, maruziyet sürerken veya maruziyetten kısa süre sonra ölçüldü. Aynı rutin konsantrasyonlarda, larvaların 24 saatlik testte lokomotor aktivitesi azaldı; bu sonuç farklı suşlarda ve laboratuvarlarda tekrarlanabildi. Davranışsal karıştırıcı etki çalışması, boyanın bilinen monoamin oksidaz inhibisyonuyla tutarlı biçimde, etkinin serotonerjik tonusla ilişkili olduğuna işaret etti. En açıklayıcı bulgu, metilen mavisi içeren embriyo ortamının SSRI fluoksetine karşı beklenen lokomotor yanıtı maskelemesiydi. Dolayısıyla mavi suda yürütülen bir tarama testi, berrak suyun ortaya çıkaracağı bir ilaç etkisini gözden kaçırabilir.

Gerçekte bir çelişki yoktur. Bir bileşik, bir testte ortamdan uzaklaştırılmasından iki gün sonra saptanabilir kalıcı bir etki bırakmayabilir, ancak başka bir testte ortamda bulunduğu sürece etkin olabilir. Pratik yorum şudur: etki saptanmayan sonuç, bir üst konsantrasyon sınırını destekler; etkisizlik iddiasını desteklemez. Etki saptanan sonuç ise asıl önemli riski tanımlar: çoğu laboratuvarın kullandığı düzenin aynısında, ölçüm süresi boyunca etkin maruziyet.

Bir redoks testinin içindeki redoks boyası

Bir başka tuzak, hayvanı değil ölçüm aracını bozduğu için ayrı bir paragrafı hak eder. Alamar Blue enerji harcaması testinin kendisi redoks kimyasına dayanır: resazurin, floresan resorufine indirgenir. Metilen mavisi de redoks kimyasına katılır. Hücresiz kontrollerde, her iki bakım konsantrasyonu da 24 saat sonra Alamar Blue floresansını küçük ama istatistiksel olarak anlamlı ölçüde azalttı. Hayvan deneylerinde, maruz bırakılan embriyolar testten önce boyasız ortamda en az üç kez yıkandı ve yumurtadan çıkmış larvalardaki biyolojik etki, hücresiz ortamda görülen girişimi aştı. Dolayısıyla iki durum da doğrudur: yıkanmış hayvanlarda gerçek bir metabolik etki vardır ve yıkamayla uzaklaştırılmamış boya buna doğrudan bir kimyasal artefakt ekler. Kontroller bu ikisini ayırmalıdır; aksi takdirde her iki sayısal sonuç da anlamını yitirir. Boya temelli test sonuçlarını yorumlamaya ilişkin genel rehberlik burada özellikle önemlidir.

Gelişim evreleri zaman çizelgesi

Bu makale için hazırlanan özgün içerik. Aksi belirtilmedikçe konsantrasyonlar, iki standart bakım değeri olan 0.00005% ve 0.0001%'tir.

EvreTest edilen özellikBakım konsantrasyonlarında bulgu
0 ila 1 dpf, yumurtadan çıkış öncesi embriyoBazal oksijen tüketimi, mitokondriyal transkriptlerTüketim arttı; kompleks I ve IV transkriptleri azaldı
2 dpf, yumurtadan çıkış dönemiMembran potansiyeli; yumurtadan çıkışın ilerleyişiPotansiyel 0.00005% ile 0.0003% arasında arttı; 0.0001%'te yumurtadan çıkış geçici olarak öne geçti
3 ila 4 dpf, yumurtadan çıkış sonrası akut maruziyetYalnızca 24 h maruziyet sonrasında enerji harcamasıHarcama azaldı; sürekli maruziyetle aynı sonuç görüldü
4 ila 5 dpf, yumurtadan çıkmış larvalarEnerji harcaması; mitokondriyal transkriptlerHarcama 24 ve 48 h sonunda azaldı; kompleks I, II, III ve ATP sentaz transkriptleri azaldı
5 ila 6 dpf, larva davranışı24 saatlik lokomotor aktivite; fluoksetin yanıtıLokomotor aktivite azaldı; SSRI yanıtı maskelendi
Boyasız ortamda 2 günün ardından 6 dpfAydınlık-karanlık koşullarında lokomotor aktivite; morfoloji10 mikromolara kadar kalıcı etki saptanmadı

Akılda tutulması gereken örüntü, metabolik sonlanım noktalarında erken dönemde artış ve daha sonra azalıştır. Davranışsal etkiler maruziyet sırasında bulunur; bunu sınayan tek testte ise maddenin uzaklaştırılmasının ardından saptanamaz hale gelir.

Kontrol tasarımı için kontrol listesi

İkinci özgün içerik. Metilen mavisi kullanılan zebra balığı protokolleri bir deneyle kesiştiğinde bu listeyi kullanın.

  1. Boyayı su olarak değil, reaktif olarak raporlayın. Konsantrasyonu hem yüzde hem de mikromolar cinsinden; başlangıç ve bitişi döllenmeden sonraki saat veya gün cinsinden; yenileme takvimini ve her ölçümden önceki boyasız bekletme süresini belirtin.
  2. Kontrolleri soruya uygun seçin. Test kimyasalına ilişkin bir çalışma boyasız kontroller gerektirir; bakıma ilişkin bir çalışma ise mantar önleyici sonucun kaydedildiği boyasız ve boyalı deney kolları gerektirir, çünkü atıf yapılan iki çalışma da mantar önleyici etkinliği ölçmemiştir.
  3. Redoks testlerinden önce yıkayın, ardından doğrulayın. Boyasız ortamda en az üç kez durulayın ve eş zamanlı olarak hücresiz bir boya ve reaktif kontrolü yürütün; çünkü boya Alamar Blue sinyalini doğrudan azaltır.
  4. Davranış ve monoamin sonlanım noktalarını yüksek riskli kabul edin. Lokomotor aktivite, irkilme, kaygı benzeri davranış, antidepresan ve MAO inhibitörü çalışmaları ölçüm sırasında boyadan kaçınmalı veya ilgili sonlanım noktasında etkisiz olduğunu göstermelidir; bir ila iki gün boyasız ortamda bekletme, bir lokomotor etkiyi ortadan kaldırmıştır, ancak bunun diğer deney düzenlerinde geçerli olduğu kanıtlanmamıştır.
  5. Metabolik ve mitokondriyal sonlanım noktalarını her evrede yüksek riskli kabul edin. Oksijen tüketimi, enerji harcaması, membran potansiyeli ve solunum zinciri transkriptleri bakım konsantrasyonlarında değişir; yumurtadan çıkıştan önce ve sonra değişimin yönü tersine döner.
  6. Bir tasarımdaki etkisizlik sonucunu başka tasarımlara taşımayın. Boyasız bekletme sonrasında etki saptanmaması, devam eden maruziyet için geçerli değildir; morfolojik etki saptanmaması, metabolizma veya ilaç etkileşimi için geçerli değildir; bir suşta, sıcaklıkta veya test süresinde elde edilen sonuç diğerleri için geçerli değildir.
  7. İzlediğiniz kılavuzu ve alternatifini belirtin. CCAC, Avrupa veya Cold Spring Harbor konsantrasyonlarını açıkça adlandırın ve OECD embriyo testinde boyaya yer verilmediğini belirtin; böylece okur hayvanlarınızın hangi koşullarda tutulduğunu değerlendirebilir.

Bunların hiçbiri, yumurtaları canlı tutmak için boyanın kullanılmasına karşı bir gerekçe değildir. Karşı çıkılan şey, bir bakım tercihinin incelenmeden verilere taşınmasıdır. Kaptaki mavilik, farmakolojik özellikleri olan bir moleküldür ve sonuçları en fazla çarpıtılabilecek deneyler, genç zebra balıklarının artık tercih edildiği yüksek kapasiteli metabolik ve nörodavranışsal taramalardır. Kullanımını kaydedin, uygun kontroller oluşturun, ölçümden önce uzaklaştırın ve fark edilmeden kimyasına katılıyor olabileceği testi kontrol edin.

Google AdSense