ການທົດສອບຢີສດ້ວຍເມທິລີນບລູ: ການນັບເຊວທີ່ມີຊີວິດ ທຽບກັບການຈັບເວລາການຫາຍໃຈ

ມີຫຼອດສອງຫຼອດວາງຢູ່ເທິງໂຕະປະຕິບັດການ. ທັງສອງຫຼອດເປັນສີຟ້າ. ໃນຫຼອດໜຶ່ງ, ເຊວສີຟ້າທີ່ເຫັນຜ່ານກ້ອງຈຸລະທັດໝາຍເຖິງຢີສທີ່ຕາຍແລ້ວ. ໃນອີກຫຼອດໜຶ່ງ, ການທີ່ຫຼອດປ່ຽນຈາກສີຟ້າເປັນບໍ່ມີສີໝາຍເຖິງຢີສທີ່ຍັງມີຊີວິດ ແລະກຳລັງຫາຍໃຈ. ສີຍ້ອມດຽວກັນ ແຕ່ການແປຜົນກົງກັນຂ້າມ. ຖ້າສັບສົນລະຫວ່າງການທົດສອບສອງແບບນີ້, ຂໍ້ສະຫຼຸບທັງໝົດຈະກັບດ້ານ.

ຄວາມແຕກຕ່າງນີ້ແມ່ນໃຈຄວາມຂອງບົດຄວາມທັງໝົດ. ເມທິລີນບລູເປັນສີຍ້ອມຣີດອກ: ໃນຮູບທີ່ຖືກອອກຊິໄດຊ໌ຈະເປັນສີຟ້າ, ແລະໃນຮູບທີ່ຖືກຣີດິວຊ໌ຈະເປັນລິວໂຄເມທິລີນບລູທີ່ບໍ່ມີສີ. ການນັບເຊວທີ່ມີຊີວິດນຳໃຊ້ເຄມີນີ້ໃນການສັງເກດຊ່ວງເວລາສັ້ນຜ່ານກ້ອງຈຸລະທັດ. ການທົດລອງການຫາຍໃຈນຳໃຊ້ມັນໃນປະຕິກິລິຍາຂອງສ່ວນປະສົມທັງໝົດທີ່ມີການຈັບເວລາ. ແຕ່ລະແບບຕ້ອງມີຂັ້ນຕອນ, ຊຸດຄວບຄຸມ ແລະການພິຈາລະນາຜົນຢ່າງຮອບຄອບຂອງຕົນເອງ.

ການນັບເຊວທີ່ມີຊີວິດ: ຍ້ອມສີໃນເວລາສັ້ນ ແລ້ວອ່ານຜົນໂດຍໄວ

ຂັ້ນຕອນແບບທີ່ໃຊ້ໃນໂຮງງານເບຍແມ່ນຮູບແບບທີ່ມີມາດຕະຖານຊັດເຈນທີ່ສຸດ. ກຽມເມທິລີນບລູ 0.01% w/v ໃນໂຊດຽມຊິເຕຣດ 2%, ປະສົມກັບສານແຂວນລອຍຢີສໃນອັດຕາ 1:1 ແລະກວດເບິ່ງສ່ວນປະສົມຫຼັງຈາກຊ່ວງເວລາສັ້ນທີ່ກຳນົດໄວ້. ຊ່ວງເວລາທີ່ຕີພິມມີຄວາມແຕກຕ່າງກັນ ຕັ້ງແຕ່ 1 ຫາ 2 ນາທີໃນຄູ່ມືຂອງສະຖາບັນວິທະຍາສາດການຜະລິດເບຍ ໄປຈົນເຖິງປະມານ 5 ນາທີໃນຂັ້ນຕອນການຄົ້ນຄວ້າ, ໂດຍວິທີຈຸລະຊີວະວິທະຍາສຳລັບໄວນ໌ຂອງ OIV ກຳນົດໃຫ້ກວດພາຍໃນ 10 ນາທີ. ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງສີຍ້ອມໃນສ່ວນປະສົມທີ່ໃຊ້ນັບຈະຢູ່ໃກ້ 0.005%. ໃສ່ສ່ວນປະສົມລົງໃນຫ້ອງນັບເຊວ Neubauer ແບບປັບປຸງ ແລະໃຊ້ກຳລັງຂະຫຍາຍປະມານ 400x ເພື່ອຈັດເຊວສີຟ້າເຂັ້ມເປັນເຊວທີ່ບໍ່ມີຊີວິດ ແລະເຊວທີ່ບໍ່ຕິດສີເປັນເຊວທີ່ມີຊີວິດ. ວິທີ OIV ຈັດເຊວສີຟ້າອ່ອນເປັນເຊວທີ່ມີຊີວິດ, ເຊິ່ງເປັນສັນຍານເບື້ອງຕົ້ນຂອງບັນຫາການຕັດສິນຕາມມຸມມອງຂອງຜູ້ກວດທີ່ຈະກ່າວເຖິງຕໍ່ໄປ.

ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງເຊວຄຳນວນຈາກຮູບຊົງ ແລະຂະໜາດຂອງຫ້ອງນັບ. ເມື່ອນັບທັງໝົດໃນຊ່ອງສີ່ຫຼ່ຽມກາງທີ່ມີດ້ານຍາວ 1 mm, ຈຳນວນເຊວຕໍ່ mL ເທົ່າກັບ N ຄູນຕົວຄູນການເຈືອຈາງ ຄູນ 10^4, ໂດຍ N ແມ່ນຈຳນວນທີ່ນັບໄດ້ໃນພື້ນທີ່ນັ້ນ, ຕາມທີ່ລະບຸໃນວິທີທົດສອບຢີສຂອງ ASBC. ອັດຕາການມີຊີວິດຄຳນວນໄດ້ງ່າຍກວ່າ: ຈຳນວນເຊວທີ່ບໍ່ຕິດສີຫານດ້ວຍຈຳນວນເຊວທັງໝົດ ແລ້ວຄູນ 100. ນັບເຊວປະມານ 400 ເຊວເພື່ອປະເມີນອັດຕາການມີຊີວິດ, ຕາມການສຶກສາປຽບທຽບໃນໂຮງງານເບຍຂອງ FEMS ແລະແນວປະຕິບັດຂອງ OIV. ໃຊ້ກົດການນັບເຊວຢູ່ຂອບພຽງແບບດຽວຢ່າງສະໝ່ຳສະເໝີ, ຕົວຢ່າງເຊັ່ນ ນັບເຊວທີ່ຢູ່ເທິງເສັ້ນຕາຂ່າຍດ້ານລຸ່ມ ແລະດ້ານຊ້າຍ, ແຕ່ບໍ່ນັບເຊວທີ່ຢູ່ດ້ານເທິງ ແລະດ້ານຂວາ.

ຕ້ອງກຳນົດກົດການນັບໜໍ່ກ່ອນເລີ່ມນັບ. ຂໍ້ຕົກລົງທີ່ໃຊ້ກັນທົ່ວໄປແມ່ນນັບໜໍ່ເປັນເຊວແຍກຕ່າງຫາກເມື່ອມັນມີຂະໜາດປະມານເຄິ່ງໜຶ່ງຂອງເຊວແມ່, ແລະນັບລວມກັບເຊວແມ່ຖ້າມັນນ້ອຍກວ່ານັ້ນ. ບໍ່ວ່າຈະເລືອກກົດແບບໃດ, ໃຫ້ໃຊ້ກັບທຸກຊ່ອງ ແລະຂຽນໄວ້ໃນແບບບັນທຶກ ເພື່ອໃຫ້ຜູ້ທີ່ນັບຕໍ່ໄປເຮັດແບບດຽວກັນ.

ແບບບັນທຶກການນັບ (ພິມແບບນີ້)

ແບບບັນທຶກນີ້ເປັນສື່ທີ່ສ້າງຂຶ້ນໂດຍສະເພາະສຳລັບບົດຄວາມນີ້. ຄັດລອກລົງໃນປຶ້ມບັນທຶກ ຫຼືພິມໜຶ່ງແຜ່ນຕໍ່ຕົວຢ່າງ.

ອັດຕາການມີຊີວິດ (%) = 100 x ເຊວທີ່ບໍ່ຕິດສີ / (ເຊວທີ່ບໍ່ຕິດສີ + ເຊວສີຟ້າເຂັ້ມ). ຈຳນວນເຊວທັງໝົດຕໍ່ mL = N x ຕົວຄູນການເຈືອຈາງ x 10^4, ໂດຍ N ໄດ້ຈາກພື້ນທີ່ຫ້ອງນັບທີ່ກຳນົດໄວ້. ບັນທຶກໄລຍະເວລາຍ້ອມສີໄວ້ຂ້າງຜົນ, ເພາະຄ່າອັດຕາການມີຊີວິດທີ່ບໍ່ລະບຸເວລາບໍ່ສາມາດເຮັດຊ້ຳໃຫ້ໄດ້ຜົນເດີມ.

ເປັນຫຍັງຄ່າອັດຕາການມີຊີວິດຈຶ່ງຄາດເຄື່ອນ

ເວລາແມ່ນປັດໄຈລົບກວນທຳອິດ ແລະມັນມີຜົນໄດ້ທັງສອງທິດທາງ. ເຊວທີ່ມີການເຜົາຜານຢ່າງຫ້າວຫັນຈະຣີດິວຊ໌ສີຍ້ອມ, ດັ່ງນັ້ນ ການອ່ານຜົນໄວເກີນໄປອາດເຫັນເຊວທີ່ມີຊີວິດກ່ອນທີ່ມັນຈະຣີດິວຊ໌ສີໄດ້ສຳເລັດ ແລະຈັດມັນເປັນເຊວຕາຍຢ່າງຜິດພາດ. ແຕ່ການສຳຜັດສີເປັນເວລາດົນກໍເປັນພິດໃນຕົວມັນເອງ ແລະເຮັດໃຫ້ເກີດເຊວສີຟ້າທີ່ເສຍຫາຍຈິງ, ເຮັດໃຫ້ການຍ້ອມສີບົ່ງຊີ້ການຕາຍຢ່າງຄາດເຄື່ອນ. ຂັ້ນຕອນສຳລັບການສອນໃນຫ້ອງປະຕິບັດການຈຶ່ງກຳນົດໃຫ້ອ່ານຜົນພາຍໃນ 5 ນາທີ, ດັ່ງທີ່ລະບຸໃນຂັ້ນຕອນການສອນເລື່ອງຢີສຂອງ Wisconsin. ຂໍ້ສະຫຼຸບທີ່ຮອບຄອບແມ່ນການອ່ານຜົນເມທິລີນບລູຂຶ້ນກັບເວລາ, ດັ່ງນັ້ນ ໃຫ້ກຳນົດຊ່ວງເວລາສັ້ນພຽງຊ່ວງດຽວ ແລະຮັກສາໃຫ້ຄົງທີ່ສຳລັບທຸກຕົວຢ່າງໃນຊຸດດຽວກັນ.

ຕົວຢ່າງທີ່ມີອັດຕາການມີຊີວິດຕ່ຳມີຄວາມລຳອຽງອີກປະການໜຶ່ງ. ວິທີມາດຕະຖານເຕືອນວ່າເມທິລີນບລູອາດປະເມີນອັດຕາການມີຊີວິດສູງກວ່າຄວາມເປັນຈິງເມື່ອຄ່ານີ້ຕ່ຳກວ່າປະມານ 80%, ເພາະເຊວທີ່ຍັງຣີດິວຊ໌ສີຍ້ອມໄດ້ອາດບໍ່ມີຄວາມສາມາດໃນການແຜ່ພັນອີກແລ້ວ. ເອກະສານດ້ານການຜະລິດເບຍອະທິບາຍຄວາມບໍ່ໜ້າເຊື່ອຖືແບບດຽວກັນເມື່ອອັດຕາການມີຊີວິດຫຼຸດລົງຫຼາຍ. ໃຫ້ຖືວ່າເມທິລີນບລູເປັນວິທີປະເມີນແບບປະມານທີ່ວ່ອງໄວ, ແລະຢືນຢັນການຕັດສິນໃຈທີ່ສຳຄັນເມື່ອອັດຕາການມີຊີວິດຕ່ຳ, ເຊັ່ນ ການນຳຫົວເຊື້ອກັບໄປໃຊ້ໝັກອີກຄັ້ງ, ດ້ວຍການນັບໂຄໂລນີເທິງຈານລ້ຽງເຊື້ອ ຫຼືການຍ້ອມສີອີກວິທີໜຶ່ງທີ່ໃຊ້ເສີມກັນ.

ຜົນຈາກອົງປະກອບຂອງຕົວຢ່າງເປັນປັດໄຈທີສາມ. ວິທີ OIV ດຳເນີນການທີ່ pH ໃກ້ 4.6 ແລະເຕືອນວ່າຕົວຢ່າງທີ່ມີ pH ຕ່ຳ ແລະມີຄວາມສາມາດບັບເຟີສູງຈະຂັດຂວາງພຶດຕິກຳທີ່ຖືກຕ້ອງຂອງສີຍ້ອມ, ພ້ອມທັງແນະນຳບໍ່ໃຫ້ໃຊ້ການທົດສອບນີ້ເມື່ອນ້ຳຕານສູງກວ່າ 100 g/L, ເພາະເຊວຈະປາກົດເປັນສີຟ້າອ່ອນທີ່ຊວນໃຫ້ແປຜົນຜິດ. ການທົດລອງປຽບທຽບ pH ຂອງການຍ້ອມສີພົບວ່າຄວາມໄວໃນການກວດຈັບປ່ຽນແປງຫຼາຍໃນຊ່ວງທີ່ທົດສອບ, ສອດຄ່ອງກັບການສຶກສາວິທີເມທິລີນບລູທີ່ຂຶ້ນກັບ pH. ເສດສິ່ງປົນເປື້ອນເປັນອີກບັນຫາໜຶ່ງ: ອະນຸພາກທີ່ຕິດສີໃນສ່ວນປະສົມທັນຍາພືດສຳລັບໝັກທີ່ບໍ່ສະອາດມີລັກສະນະຄ້າຍເຊວຕາຍ ແລະເພີ່ມຄວາມແຕກຕ່າງຂອງຜົນລະຫວ່າງຜູ້ປະຕິບັດງານ.

ຄວາມແຕກຕ່າງນັ້ນມີການວັດເປັນຕົວເລກ, ບໍ່ແມ່ນພຽງຄຳບອກເລົ່າ. ໃນການທົດລອງໃນໂຮງງານເບຍເປັນເວລາຫົກເດືອນທີ່ລາຍງານໃນການປຽບທຽບຢີສຂອງ FEMS, ການວັດດ້ວຍເມທິລີນບລູສອງຊ້ຳມີຄ່າສ່ວນບ່ຽງເບນມາດຕະຖານສະເລ່ຍ 6.1% ທຽບກັບ 0.2% ສຳລັບການວັດເຊວແບບໄຫຼຜ່ານດ້ວຍອອກໂຊນອລ, ໂດຍຜູ້ປະຕິບັດງານສອງຄົນໃຫ້ຜົນຕ່າງກັນສູງເຖິງ 13 ຈຸດເປີເຊັນໃນຕົວຢ່າງດຽວກັນ. ການປຽບທຽບວິທີປະເມີນການມີຊີວິດແບບປະລິມານໃນປີ 2023 ພົບວ່າການສ່ອງດ້ວຍກ້ອງຈຸລະທັດຟລູອໍເຣສເຊນ ແລະການວັດເຊວແບບໄຫຼຜ່ານມີຄວາມແມ່ນຊ້ຳສູງກວ່າຫຼາຍ, ພ້ອມທັງສະແດງວ່າປະສິດທິພາບຂຶ້ນກັບຊະນິດຂອງຢີສ ແລະອົງປະກອບຂອງຕົວຢ່າງ. ຄຳອະທິບາຍວິທີດັ້ງເດີມຂອງ Painting ແລະ Kirsop (PMID 24430080) ຍັງຄົງເປັນແຫຼ່ງອ້າງອີງຫຼັກ, ແລະບົດທົບທວນການທົດສອບການມີຊີວິດ ແລະຄວາມຫ້າວຫັນຂອງຢີສທີ່ກວ້າງກວ່າ (PMID 25154541) ຈັດເມທິລີນບລູໄວ້ໃນກຸ່ມການທົດສອບທີ່ໃຊ້ເສີມກັນ ແທນທີ່ຈະເປັນການທົດສອບທີ່ຕັດສິນໄດ້ເດັດຂາດ. ທຣິພານບລູບໍ່ແມ່ນຕົວເລືອກທີ່ດີກວ່າໂດຍອັດຕະໂນມັດໃນກໍລະນີນີ້: ມັນບົ່ງຊີ້ການສູນເສຍຄວາມສົມບູນຂອງເຢື່ອຫຸ້ມເຊວ, ໃນຂະນະທີ່ເມທິລີນບລູບົ່ງຊີ້ການຮັບສີເຂົ້າສູ່ເຊວຮ່ວມກັບກິດຈະກຳຣີດັກຊັນ, ດັ່ງນັ້ນ ເຊວທີ່ຢູ່ໃນພາວະຄຽດອາດຖືກຈັດປະເພດຕ່າງກັນດ້ວຍສີຍ້ອມສອງຊະນິດນີ້.

ການທົດລອງການຫາຍໃຈ: ຈັບເວລາທີ່ສີຟ້າຫາຍໄປ

ການທົດສອບແບບທີສອງບໍ່ໃຊ້ກ້ອງຈຸລະທັດເລີຍ. ໃສ່ຢີສ ບວກກັບກລູໂຄສ ແລະເມທິລີນບລູທີ່ເຈືອຈາງລົງໃນຫຼອດປິດ, ແລ້ວຈັບເວລາວ່າສີຟ້າໃຊ້ເວລາດົນປານໃດຈຶ່ງຫາຍໄປ. ເມື່ອເຊວເຜົາຜານສານອາຫານ, ມັນຈະສ້າງຕົວພາອິເລັກຕຣອນທີ່ມີອຳນາດຣີດັກຊັນ ເຊິ່ງປ່ຽນສີຍ້ອມສີຟ້າໃຫ້ເປັນຮູບທີ່ບໍ່ມີສີ, ໃນຂະນະທີ່ອົກຊີເຈນທີ່ລະລາຍຢູ່ຈະອອກຊິໄດຊ໌ມັນກັບຄືນ. ເມື່ອເຊວໃຊ້ອົກຊີເຈນຈົນຫຼຸດລົງ, ຣີດັກຊັນສຸດທິຈະເດັ່ນກວ່າ ແລະສີໃນຫຼອດຈະຫາຍໄປ. ດັ່ງນັ້ນ ຈຸດສິ້ນສຸດຈຶ່ງສະທ້ອນຄວາມສົມດຸນລະຫວ່າງການຫາຍໃຈ, ຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງສີຍ້ອມ ແລະປະລິມານອົກຊີເຈນທີ່ມີ, ແລະຄວນລາຍງານເປັນເວລາຣີດັກຊັນ ຫຼືເວລາການຫາຍໄປຂອງສີເມທິລີນບລູ, ບໍ່ແມ່ນເປັນອັດຕາການໃຊ້ອົກຊີເຈນໂມເລກຸນໂດຍກົງ.

ໃຊ້ສີຍ້ອມທີ່ເຈືອຈາງກວ່າໃນການນັບເຊວທີ່ມີຊີວິດຫຼາຍ ເພື່ອໃຫ້ເວລາທີ່ວັດໄດ້ຢູ່ໃນຊ່ວງທີ່ສະດວກ. ຄູ່ມືການປະຕິບັດທີ່ກຳນົດໃຫ້ເຮັດໃນລະດັບ A level ຂອງ AQA ກຳນົດມາດຕະຖານເລື່ອງນີ້ໄວ້ຢ່າງຊັດເຈນ: ກລູໂຄສ 1 g ຕໍ່ນ້ຳ 100 mL ທີ່ອຸ່ນໃຫ້ໄດ້ປະມານ 30 C, ເພີ່ມຢີສແຫ້ງ 5 g ທັນທີກ່ອນໃຊ້, ແລະໃຊ້ສານລະລາຍສີຍ້ອມສຳລັບທົດສອບປະມານ 0.001% ທີ່ກຽມໂດຍເຈືອຈາງສານລະລາຍຕັ້ງຕົ້ນ 1% ປະລິມານ 0.1 mL ໃຫ້ໄດ້ປະລິມາດລວມ 100 mL. ປະສົມສານແຂວນລອຍຢີສກັບກລູໂຄສ 2 mL ກັບສານລະລາຍສີຍ້ອມສຳລັບທົດສອບ 2 mL, ປ່ອຍໃຫ້ອຸນຫະພູມສົມດຸນກັບອຸນຫະພູມທົດສອບ, ສັ່ນຄັ້ງດຽວເປັນເວລາ 10 ວິນາທີ, ເລີ່ມຈັບເວລາ ແລະບໍ່ສັ່ນອີກ. ການສັ່ນຈະນຳອົກຊີເຈນກັບເຂົ້າມາ ແລະເຮັດໃຫ້ຫຼອດກັບເປັນສີຟ້າ, ເຊິ່ງເປັນຄວາມຄາດເຄື່ອນຈາກຂັ້ນຕອນທີ່ໃຫຍ່ທີ່ສຸດ. AQA ລະບຸວ່າຕາມປົກກະຕິສ່ວນປະສົມທີ່ກຽມຄວນຈະບໍ່ມີສີພາຍໃນປະມານ 5 ນາທີທີ່ 35 C, ໂດຍຄ່າສະເລ່ຍຈາກການທົດລອງແມ່ນ 275 s ທີ່ 20 C, 128 s ທີ່ 35 C ແລະ 145 s ທີ່ 45 C. ຄ່າເຫຼົ່ານີ້ເປັນຕົວຢ່າງຈາກການຈັດການທົດລອງແບບໜຶ່ງ, ບໍ່ແມ່ນເກນອ້າງອີງສາກົນ. ຄວາມສຳພັນເຊິງປະລິມານລະຫວ່າງອັດຕາຣີດັກຊັນ ແລະຢີສທີ່ມີການເຜົາຜານຢ່າງຫ້າວຫັນພາຍໃຕ້ເງື່ອນໄຂຄວບຄຸມມີການສຶກສາຣີດັກຊັນໂດຍສະເພາະຮອງຮັບ, ລວມທັງຜົນງານທີ່ມີລະຫັດ PMID 25773544 ແລະການສຶກສາກົນໄກໃນ Yeast (2014).

ຕົວຢ່າງການປ່ຽນແປງຕາມເວລາ (ສື່ທີ່ສ້າງຂຶ້ນໂດຍສະເພາະ)

ຕາຕະລາງຂ້າງລຸ່ມເປັນຕົວຢ່າງທີ່ສ້າງຂຶ້ນໂດຍສະເພາະສຳລັບບົດຄວາມນີ້ ໂດຍໃຊ້ການຈັດການທົດລອງແບບ AQA ທີ່ອະທິບາຍໄວ້ຂ້າງເທິງ: ສ່ວນປະສົມຢີສກັບກລູໂຄສ 2 mL ບວກກັບສານລະລາຍສີຍ້ອມສຳລັບທົດສອບປະມານ 0.001% ປະລິມານ 2 mL, ສັ່ນຄັ້ງດຽວເປັນເວລາ 10 ວິນາທີ ແລ້ວບົ່ມໄວ້ໂດຍບໍ່ລົບກວນ. ຂໍ້ມູນໃນຕາຕະລາງເປັນຄ່າອ່ານຕົວຢ່າງໃນຮູບແບບທີ່ກຸ່ມນັກຮຽນຄວນບັນທຶກ, ໂດຍດັດຊະນີອັດຕາກຳນົດເປັນ 1 ຫານດ້ວຍເວລາທີ່ສີຫາຍໄປໃນໜ່ວຍວິນາທີ. ທົດລອງດ້ວຍຫຼອດແບບດຽວກັນ ແລະແທນຂໍ້ມູນເຫຼົ່ານີ້ດ້ວຍຄ່າທີ່ວັດໄດ້.

ສ້າງກາຟດັດຊະນີອັດຕາທຽບກັບອຸນຫະພູມສຳລັບຫຼອດ A, B ແລະ C. ເສັ້ນໂຄ້ງຈະສູງຂຶ້ນແລ້ວຮາບພຽງ ຫຼືຫຼຸດລົງ, ເຊິ່ງເປັນຮູບແບບທີ່ຄາດໝາຍຈາກການຂັບເຄື່ອນດ້ວຍເອນໄຊມ໌, ບໍ່ແມ່ນເສັ້ນຊື່. ຫຼອດ D, E ແລະ F ບໍ່ແມ່ນຈຸດຂໍ້ມູນເທິງເສັ້ນໂຄ້ງນັ້ນ. ພວກມັນເປັນຊຸດຄວບຄຸມທີ່ເຮັດໃຫ້ສາມາດແປຄວາມໝາຍຂອງເສັ້ນໂຄ້ງໄດ້.

ຊຸດຄວບຄຸມທີ່ເຮັດໃຫ້ແຕ່ລະການທົດສອບມີຄວາມໝາຍ

ການທົດລອງການຫາຍໃຈທຸກຄັ້ງຕ້ອງມີຊຸດຄວບຄຸມສາມຊຸດຄຽງຄູ່ກັນ. ຢີສທີ່ຕົ້ມ ຫຼືຂ້າແລ້ວ ບວກກັບກລູໂຄສ ແລະສີຍ້ອມຄວນຈະຍັງເປັນສີຟ້າ, ເພື່ອພິສູດວ່າຣີດັກຊັນທີ່ວ່ອງໄວຂຶ້ນກັບການເຜົາຜານຂອງເຊວທີ່ມີຊີວິດ. ຢີສທີ່ມີຊີວິດບວກກັບສີຍ້ອມໂດຍບໍ່ເພີ່ມກລູໂຄສເປັນຊຸດຄວບຄຸມສານຕັ້ງຕົ້ນ, ແຕ່ຍັງຄວນຄາດວ່າສີຈະຫາຍໄປຊ້າໆ ເພາະຢີສໃຊ້ສານອາຫານສຳຮອງພາຍໃນເຊວ. ກລູໂຄສບວກກັບສີຍ້ອມໂດຍບໍ່ມີຢີສເປັນຊຸດເປົ່າທາງເຄມີທີ່ຈຳເປັນ, ເພາະກລູໂຄສໃນສະພາບດ່າງສາມາດຣີດິວຊ໌ເມທິລີນບລູໄດ້ໂດຍບໍ່ມີເຊວໃດໆ.

ການນັບເຊວທີ່ມີຊີວິດຕ້ອງການການຄວບຄຸມອີກແບບໜຶ່ງ: ຄວາມຄົງທີ່ຂອງຂັ້ນຕອນ. ໃຊ້ສານລະລາຍສີຍ້ອມຕັ້ງຕົ້ນດຽວກັນ, ອັດຕາສ່ວນປະສົມດຽວກັນ, ໄລຍະເວລາຍ້ອມສີດຽວກັນ, ພື້ນທີ່ຫ້ອງນັບດຽວກັນ, ກົດການນັບໜໍ່ ແລະເຊວຢູ່ຂອບດຽວກັນ, ແລະນັບໂດຍບໍ່ຮູ້ຂໍ້ມູນຕົວຢ່າງທີ່ອາດມີອິດທິພົນຕໍ່ການຕັດສິນເມື່ອເປັນໄປໄດ້. ເມື່ອຜູ້ປະຕິບັດງານສອງຄົນໃຫ້ຜົນຕ່າງກັນສິບຈຸດເປີເຊັນ, ແບບບັນທຶກມັກຈະເຜີຍໃຫ້ເຫັນສາເຫດ: ເວລາຕ່າງກັນ, ເກນຄວາມເຂັ້ມຂອງສີຟ້າຕ່າງກັນ ຫຼືກົດການນັບໜໍ່ຕ່າງກັນ. ເຕັກນິກການກຽມ ແລະການສ່ອງເບິ່ງເຊວທີ່ຍ້ອມສີເຊື່ອມໂຍງກັບວິທີຍ້ອມສີແບັກທີເຣຍແບບງ່າຍ, ສ່ວນພາບລວມທີ່ກວ້າງກວ່າກ່ຽວກັບສິ່ງທີ່ສີຍ້ອມນີ້ຍ້ອມຕິດໃນຕົວຢ່າງປະເພດຕ່າງໆມີຢູ່ໃນປຶ້ມຮວບຮວມພາບການຍ້ອມສີສຳລັບກ້ອງຈຸລະທັດ. ສຳລັບຫຼັກຟີຊິກທີ່ຢູ່ເບື້ອງຫຼັງການອ່ານຄວາມເຂັ້ມຂອງສີຟ້າແບບປະລິມານ, ເອກະສານອ້າງອີງການດູດກືນແສງທີ່ລະບຸເງື່ອນໄຂອະທິບາຍວ່າເປັນຫຍັງຄ່າສຳປະສິດແຕ່ລະຄ່າຈຶ່ງຕ້ອງລະບຸຄຽງຄູ່ກັບຕົວທຳລະລາຍ, pH ແລະເງື່ອນໄຂຄວາມເຂັ້ມຂຸ້ນຂອງມັນ.

ເລືອກການທົດສອບຕາມຄຳຖາມ. ມີເຊວຈຳນວນເທົ່າໃດທີ່ຍັງມີຊີວິດໃນຕອນນີ້ ແມ່ນຄຳຖາມດ້ານການນັບ ທີ່ຕອບໄດ້ດ້ວຍກ້ອງຈຸລະທັດ ແລະແບບບັນທຶກ. ຢີສທີ່ລ້ຽງໄວ້ນີ້ຫາຍໃຈຫ້າວຫັນປານໃດ ແມ່ນຄຳຖາມດ້ານຈະລົນສາດ ທີ່ຕອບໄດ້ດ້ວຍໂມງຈັບເວລາ ແລະຫຼອດທີ່ຄວບຄຸມເງື່ອນໄຂ. ເມທິລີນບລູໃຊ້ໄດ້ກັບທັງສອງແບບ, ແຕ່ບໍ່ເຄີຍໃຊ້ທັງສອງແບບໃນຫຼອດດຽວກັນໃນເວລາດຽວກັນ.